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瑞士 Cytosurge FluidFM BOT 多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)
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多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)--FluidFM BOT，是將原子力系統(tǒng)、微流控系統(tǒng)、細胞培養(yǎng)系統(tǒng)為一體的單細胞操作系統(tǒng)。主要功能包括單細胞注射、單細胞提取以及單細胞分離。
FluidFM BOT極大的方便了單細胞水平的研究，尤其適合應(yīng)用于精準(zhǔn)醫(yī)療、單細胞生物學(xué)、單細胞質(zhì)譜、單細胞基因編輯、藥物研發(fā)等領(lǐng)域。
單細胞注射
無損注入的將不同類型的物質(zhì)準(zhǔn)確注入到細胞質(zhì)或者細胞核。
量化的fL級別注射。
注射后細胞存活率>95%。
每小時可注射>100個細胞。
單細胞提取 在不改變細胞生存環(huán)境的情況下實現(xiàn)單個細胞的活細胞提取。
可單獨提取細胞質(zhì)或細胞核，或者同時提取提取細胞質(zhì)和細胞核。
提取后細胞仍可存活。
細胞分離 無論懸浮或者貼壁細胞均可分離或者分選。整個過程對細胞無損傷。
點打印 納米精度的高密度點打印能夠快速建立使用諸如蛋白、DNA等物質(zhì)構(gòu)成生物感應(yīng)列陣。
納米光刻技術(shù) 打印納米精度的各種生物分子所構(gòu)成的復(fù)雜圖案。
多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)FluidFM BOT打開了傳統(tǒng)單細胞實驗手段無法觸及領(lǐng)域的大門。突破了單細胞研究、藥物開發(fā)、細胞系開發(fā)中的障礙，讓細胞膜不再成為阻礙單細胞研究的壁壘。
多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)FluidFM BOT濃縮了FluidFM科技的全部精華，尤其是在自動化程度和操作速度上的提高。它不僅保留了產(chǎn)品在生物學(xué)上的能力。更能夠?qū)⑦@些功能進行組合來創(chuàng)造更加高效、便捷全新試驗方法。
肝細胞的微量注射
HeLa細胞的微量提取
CHO細胞的單細胞分離
納米光刻DAPI染料
單細胞注射——快速、精準(zhǔn)、低損傷
更優(yōu)的CRISPR-Cas 轉(zhuǎn)染方式：
能夠進行高速、高效地將CRISPR-Cas復(fù) 合物注入細胞，幫助您克服對于傳統(tǒng) 方式極難轉(zhuǎn)染的細胞基因編輯問題。
提高質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染效率：
相比于傳統(tǒng)的轉(zhuǎn)染方式，F(xiàn)luidFM更加溫 和、快速，對細胞的損傷更小。
貼壁細胞均可注射： 對于注射細胞的種類，本產(chǎn)品并沒有太多 的限制，即使像心肌細胞這樣的注射難度 很高的細胞也能夠勝任。
精準(zhǔn)注入體積計算：
通過比對注入熒光分子物質(zhì)的熒光強度精 準(zhǔn)計算注入熒光分子的體積。
部分發(fā)表文獻：
O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904−1907. doi:10.1002/ smll.201202276 A.
Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501−2507. doi:10.1021/nl901384x
單細胞提取——
微量、低創(chuàng)、精準(zhǔn)
活細胞提取
從活細胞中直接提取內(nèi)容物，并且提取后細胞仍可存活。
電鏡成像 相比于傳統(tǒng)的裂解方式，F(xiàn)luidFM BOT提取的樣本更為干凈，可以得到很好地電鏡圖像。 
mRNA、酶活力的檢測
FluidFM BOT提取的樣本也可以直接用于酶活力的測定或mRNA的檢測。
單細胞質(zhì)譜分析 FluidFM BOT提取樣本也可應(yīng)用于單細胞代謝組學(xué)樣本的質(zhì)譜分析。 部分發(fā)表文獻：
O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibáñez, R. Steinhoff, R. Brönnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367 O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.
單細胞分離——直觀、簡單、低損
FluidFM® 一氣呵成的細胞分離過程
使用FluidFM BOT分離CHO細胞，僅僅點擊幾次鼠標(biāo)，單個細胞便精準(zhǔn)的完成了轉(zhuǎn)移。
小樣本細胞群分離的最佳選擇
對于細胞數(shù)不足以使用流式細胞儀分選時，F(xiàn)luidFM BOT很好的填補這個空白。部分發(fā)表文獻：
O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P. Dörig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1-3. doi:10.1063/1.3462979
